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免疫熒光實驗操作流程

1. 烘片:60℃烘片0.5-2小時。

2. 脫蠟水化:烘片結(jié)束后,石蠟切片依次置于以下試劑中:

    1)二甲苯I:30 min

    2)二甲苯II:30 min

    3)100%乙醇:10 min

    4)95%乙醇:10 min

    5)80%乙醇:10 min

    6)70%乙醇:10 min

    7)自來水沖洗10 min

3. 抗原修復-微波爐抗原熱修復法(可選):將組織切片轉(zhuǎn)移到沸騰的EDTA-Tris 溶液中使其完全浸透。低火加熱1min,停止加熱并靜置于微波爐中10min。然后再低火加熱3-4min,停止加熱,使EDTA-Tris 溶液在室溫自然冷卻。

4. PBST漂洗3次:去除殘留并浸泡在PBST中,在搖床中以40 RPM漂洗5 min,重復3次。

5. 阻斷內(nèi)源過氧化物酶:用3%-5% H2O2室溫孵育10min。

6. PBST漂洗3次:去除殘留并浸泡在PBST中,在搖床中以40 RPM漂洗5 min,重復3次。

7. 封閉:去除殘留,用5%BSA室溫孵育20 min。

8. 孵育FITC偶聯(lián)的抗體:去除殘留,選擇適當?shù)南♂尡壤♂孎ITC偶聯(lián)的抗體,每張片子100-200ul抗體覆蓋組織,4℃避光孵育過夜。

9. PBST漂洗3次:去除殘留并浸泡在PBST中,在搖床中以40 RPM漂洗5 min,重復3次。

10. 染核,用DAPI染,每張片子100-200ul抗體覆蓋組織,閉光孵育15min。

11. 滴加50%PBS+50%的甘油后,立即在熒光顯微鏡下觀察。